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(資料) 対訳博士論文草稿第三章

1 ふむ :2018/06/04(月) 10:54:23
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2 司書 :2018/06/04(月) 10:55:47
草稿目次との対比
(11jigen引用箇所)
3.小細胞の特性
3.1序論 - 48
3.1.1幹細胞の分化能
3.2実験 - 48
3.2.1試験管内での細胞の分化能 - 48
3.2.2生体内での分化能 - 48
3.3結果 - 49
3.3.1試験管内での細胞の分化能 - 50
3.3.2生体内での細胞の分化能 - 51
3.4第三章のまとめ - 51
3.5討論 - 51
3.6参照 - 58

3 司書 :2018/06/04(月) 10:56:37
(英文)
3. DIFFERENTIATION POTENTIAL OF SMALL CELLS

3.1 Introduction
3.1.1 Differentiation potential of stem cells
One of definitions of stem cells is multidifferentiation potential. Also the degree of their stemness is determined by their differentiation potential. According to results of section 2, sphere forming cells expressed pluripotent cell markers. Therefore in this section, we aimed to confirm their differentiation potential in vivo and in vitro.

4 翻訳機 :2018/06/04(月) 10:57:10
3. 小細胞の分化能<訳注:目次では3. Characterization of small cellsとなっているので、小保方さんがいろいろと編集中であることがわかる。これを見て草稿だと気づけない頭というのもどうなのか。>

3.1 序論
3.1.1 幹細胞の分化能
幹細胞の定義の一つは多分化能である。それらの幹細胞性の程度もまたそれらの分化能によって決定される。第2章の結果によると、球体形成細胞は多能性細胞マーカーを発現した。したがってこの章では、我々は生体内および試験管内での分化能を確認することを目的とした。

5 司書 :2018/06/04(月) 10:59:10
(英文)
3.2 Experimental<→Experiment>
3.2.1 In vitro Differentiation Assays.
In vitro differentiation assays were examined following the published differentiation culture conditions for murin ES cells.
Mesoderm lineage differentiation assay. Dissociated muscle cells were stained with anti-αmooth muscle actin antibody, anti-Myosin antibody and anti-Desmin antibody. Chondrocyte were stained with Safranin-0 and Fast Green. Osteocytes were stained with ALIZARIN RED S. After 21 days, adipocytes were stained with Oil Re 0.
Ectoderm lineage (Neural lineage) differentiation assay. Cells were plated on ortinin-coated chamber slides and incubated with anti-βIII Tubuin mouse monoclonal, anti-O4 mouse monoclonal antibody and anti-GFAP mouse monoclonal antibody.
Endoderm lineage (Hepatic) differentiation assay. Differentiated cells were detected by immunohistochemistory using anti-αfetoprotein mouse monoclonal antibody, anti-Albumin goat polyclonal antibody and anti-Cytokeratin 18 mouse monoclonal antibody. Results from immunohistochemistry were confirmed by RT-PCR.

6 翻訳機 :2018/06/04(月) 10:59:47
3.2 実験
3.2.1 試験管内分化実験<訳注:目次では3.2.1 Differentiation potential of cells in vitroとなっているので、小保方さんがいろいろと編集中であることがわかる。これを見て草稿だと気づけない頭というのもどうなのか。>
試験管内分化検証は次の公表されているげっ歯類ES細胞用分化培養条件で調べられた。
中胚葉系統分化検査。解離された筋細胞は anti-αmooth muscle actin 抗体、anti-Myosin 抗体 及び anti-Desmin 抗体で染色された。軟骨細胞はSafranin-0および Fast Greenで染色された。骨細胞はALIZARIN RED Sで染色された。21日後に脂肪細胞をOil Re 0で染色した。
外胚葉系統(神経系統)分化検査。細胞はortininコーティングされたチャンバースライド上に播種され、anti-βIII Tubuin mouse monoclonal、anti-O4 mouse monoclonal antibody及びanti-GFAP mouse monoclonal antibodyで培養された。
内胚葉系統(肝)分化検査。分化した細胞はanti-αfetoprotein mouse monoclonal antibody、anti-Albumin goat polyclonal antibody及びanti-Cytokeratin 18 mouse monoclonal antibodyを使った免疫組織化学によって検出された。免疫組織化学の結果はRT-PCRによって確認された。

7 司書 :2018/06/04(月) 11:00:32
(英文)
3.2.2 In Vivo Differentiation.
Spheres were seeded onto biodegradable scaffolds and implanted into subcutaneous of NOD/SCID mice (Charles River laboratories). After 6 weeks, the implants were harvested and fixed with 10% formaldehyde, then examined by immunocytochemistry.

8 翻訳機 :2018/06/04(月) 11:01:14
3.2.2 生体内分化<訳注:目次では3.2.2 Differentiation potential in vivoとなっているので、小保方さんがいろいろと編集中であることがわかる。これを見て草稿だと気づけない頭というのもどうなのか。>
スフィアは生分解性培地上に播種し、NOD / SCIDマウス<訳注:超免疫不全マウス> (Charles River laboratories社)の皮下に移植した。 6週間後、移植片を採取し、10%ホルムアルデヒドで固定した後に免疫細胞化学によって調べられた。

9 司書 :2018/06/04(月) 11:08:20
(英文)
3.3Results
3.3.1 Differentiation potential of cells in vitro
When representative bone marrow derived spheres were dissociated into single cells and exposed to three different differentiation media, the cells differentiated to express specific genes of the three lineages, Map2 (ectoderm), MyoD (mesoderm) and alpha-fetoprotein (AFP, endoderm) (Fig. 10).The addition of a neural differentiation medium to the in vitro environment of cells from bone marrow spheres, resulted in expression of pIII tubulin (a marker for neuron) (Fig. 11).
Alternatively, the addition of 20% fetal calf serum to the media resulted in the expression of markers representative of mesoderm; that is, a-smooth muscle actin (Fig. 11) as well as the mesenchymal cells, chondrocytes, osteocytes and adipocytes (Fig. 12). Thus, cells from spheres differentiated into all cell types of neural (neurons, oligodendrocytes and ghas) and mesenchymal stem cell lineage (chondrocytes, osteocytes and adipocytes). When exposed to a hepatocyte differentiation media the expression of a-fetoprotein (Fig. 11), was seen, suggestive of differentiation into endodermal tissue.

10 翻訳機 :2018/06/04(月) 11:09:00
3.3 結果
3.3.1 試験管内での細胞の分化能
代表的な骨髄由来のスフィアを単一細胞に解離し、三つの異なる分化培地に移植したとき、細胞は、Map2(外胚葉)、MyoD(中胚葉)及びα-フェトプロテイン(AFP、内胚葉)の三系統の特定の遺伝子を発現して分化した(図10)。骨髄スフィアからの細胞の試験管内環境への神経分化溶剤の添加は、pIIIのチューブリン(ニューロンのマーカー)の発現をもたらした(図11)。
代わりに、媒体に20%のウシ胎児血清を添加すると、中胚葉を代表するマーカーの発現を生じた。即ち平滑筋アクチン(図11)更には間葉系細胞、軟骨細胞、骨細胞及び脂肪細胞である(図12)。このように、スフィアからの細胞は神経(ニューロン、オリゴデンドロサイトおよび膠細胞)と間葉系幹細胞系譜(軟骨細胞、骨細胞及び脂肪細胞)の全ての細胞型に分化した。肝細胞分化培地にさらすと、内胚葉組織への分化を示唆するaフェトプロテインの発現(図11)が見られた。

11 司書 :2018/06/04(月) 11:10:05
(英文)
3.3.2 Differentiation potential in vivo.
Bone marrow spheres and ES cells were transplanted subcutaneously into immune deficient mice to examine their tumor-initiating capacity. As a result, after 6 weeks ES cells formed a tumor. Spheres did not form tumor as big as ES cells did. We concluded that the proliferative potential of sphere cells was much weaker than that of ES cells (Fig. 13).
Next, we investigated if transplanted cells differentiated in vivo after transplantation. Transplanted cells were harvested after 6 weeks, and processed for immunohistochemical analyses. According to results of immunohistochemical analyses, spheres differentiated into tissues derived from three germ layers in vivo (Fig. 14).

12 翻訳機 :2018/06/04(月) 11:10:42
3.3.2 生体内分化能<訳注:目次では3.3.2 Differentiation potential of cells in vivoとなっているので、小保方さんがいろいろと編集中であることがわかる。これを見て草稿だと気づけない頭というのもどうなのか。>
骨髄のスフィア及びES細胞が、それらの腫瘍形成能力を調べるために、免疫欠損マウスに皮下移植された。その結果、6週間後にES細胞は腫瘍を形成した。我々はスフィア細胞の増殖能がES細胞よりもはるかに弱かったと結論付けた(図13)。
次に我々は移植された細胞が移植後に生体内で分化するかどうかを調査した。移植された細胞は6週間後に回収され、免疫組織化学的分析に供された。免疫組織化学的分析の結果によると、スフィアは生体内で三胚葉に由来した組織に分化した(図14)。

13 司書 :2018/06/04(月) 11:11:55
(英文)
3.4 Summary of section 3
♦ Spheres differentiated into cells derived from all three germ layers in vivo and in vitro

3.5 Discussion
Spheres differentiated into cells derived from three germ layers in vitro. It is yet answered that it was either differentiation or trans-differentiation. Also it is hard to refer the difference from in vitro differentiation potential of mesenchymal stem cells.
However, at least sphere forming cells enabled to generate various mature cells. In addition, in vivo differentiation assay proved that sphere forming cells were indeed stem cells, but distinct from ES cells in proriferative potential. The relationship between proliferative potential and differentiation potential has yet been understood. Spheres in this study showed differentiation potential which fulfill the critereia for both mesenchymal stem cells and neural stem cells. We believe that the spheres studied contain precursor cells to both mesenchymal and neural stem cells lineages.
It is important to note that cells described above, were propagated as non-adherent spheres, and are not known to exist in vivo. The in vitro behavior of cells in the spheres is likely to be very different from cells that reside in vivo. How these stem cells harbor in adult body and how they exert their potential
The spheres generated seemed to be composed of heterogenous populations of cells,with some markers expressed in some spheres, and other markers expressed in different spheres generated from cells isolated from the same tissue, at the same time. We believe that these differences also may be a function of the environment in which the cells were maintained.

14 翻訳機 :2018/06/04(月) 11:12:27
3.4 第三章のまとめ
♦ スフィアは生体内および試験管内で、全三胚葉由来細胞に分化した。

3.5 討論
スフィアは試験管内で三胚葉に由来する細胞に分化した。それは分化または分化転換<訳注:すでに分化した細胞が別の細胞種に転換する現象>のいずれかであると分かっている。また間葉系幹細胞の試験管内分化能との違いに言及することは困難である。
しかし、少なくともスフィア形成細胞はさまざまな成体細胞の生成を可能にした。加えて、生体内分化実験はスフィア形成細胞が実際に幹細胞であることを証明したが、増殖能力においてES細胞と峻別された。増殖能と分化能との関係はもう理解されてきている。この研究におけるスフィアは間葉系幹細胞と神経幹細胞の両方の基準を満たす分化能を示した。私たちは研究しているスフィアに間葉系と神経系の両方の幹細胞系統への前駆細胞が含まれていると信じている。
上述の細胞が非接着性スフィアとして知られ、かつ生体内に存在することが知られていないことに留意することが重要である。スフィア内細胞の試験管内での挙動は生体内に存在する細胞とは非常に異なる可能性が高い。如何にこれらの幹細胞は成体の中にとどまり、そして如何に彼らの潜在能力を伸ばすのか。<訳注:構文が不完全なところも編集中の文章であることを示唆している。>
生成されたスフィアは、細胞の不均一な集団で構成されているようだった。同じ組織から単離された細胞から生成されていながら、同時に、いくつかのスフィアにはいくつかのマーカー発現が伴い、別のスフィアには他のマーカー発現があった。(訳注:ティシュー論文に同様の趣旨の記述がある。Spheres seemed to contain heterogeneous populations of cells, with some markers expressed in some spheres, and other markers expressed in different spheres generated from cells isolated from the same tissue, at the same time. 小保方さんはティシュー論文を下地に博論を書こうとしていることがよくわかる。)我々は、これらの違いはその中で細胞が維持されている環境の関係かなと考えている。

15 司書 :2018/06/04(月) 11:14:21
(英文)
Figure 10 in differentiation of bone marrow spheres
After 6 weeks of culture, cells change their figurations into those of cells representative of three germ layers.

Figure 11 In vitro differentiation assay of cells from 3 germ layers.
Marrowspheres were dissociated and plated in each appropriate medium. Cells from spheres,differentiated into cells representative of the three germ layers. Neural cells (left), muscle cells (middle) cells<Translation machine note: a typographical duplication error>, hepatocytes (right). Neurons stained with plll tubuline (left),. Muscle cells stained with a-smooth muscle actin (middle). Hepatocytes were stained with a-fetoprotein (right).

16 翻訳機 :2018/06/04(月) 11:15:00
図10 骨髄スフィアの分化
6週間培養後、細胞はその形状を三胚葉を代表する細胞のものに変化させる。

図11 三胚葉由来細胞の試験管内分化実験。
骨髄スフィアを解離させ、それぞれ適切な培地に蒔いた。 スフィア由来細胞は三胚葉を代表する細胞に分化する。 神経細胞(左)、筋細胞(中)細胞<訳注:これもティシュー論文の<Legends for Figure 5>の最後の方に似た以下の文章があって、それをコピペ編集しているから同じエラーが見逃されている。現代っ子の文章作法が原因。Differentiation assay from myospheres(C) into neural cells(i,ii,and iii),muscle cells(iv,v,and vi)cells<Translation machine note: a typographical duplication error>,and hepatocytes(vii,viii,and ix). > ,肝細胞(右)。ニューロンはplllチューブリンで染色された(左)。筋肉細胞は平滑筋アクチンで染色された(中央)。 肝細胞はα-フェトプロテインで染色された(右)。

17 司書 :2018/06/04(月) 11:15:42
(英文)
Figure 12 Mesenchymal lineage differentiation.
Dissociated spheres were plated into serum-containing medium and cultured for 14-21 days. Plated cells differentiated into mesenchymal lineage cells even plated cells were from spheres derived from endoderm or ectoderm tissues.
Marrow spheres differentiated into condrocytes (A), adipocytes (B) and osteocytes (C). Pnemospheres differentiated into condrocytes (D), adipocytes (E) and osteocytes (F). Spinalspheres differentiated into condrocytes (G) and adipocytes (H).

18 翻訳機 :2018/06/04(月) 11:16:14
図12 間葉系統の分化。
解離したスフィアを血清含有培地に播種し、14〜21日間培養した。 培養された細胞は、培養された細胞が内胚葉または外胚葉組織由来のスフィアからのものであってさえ、間葉系細胞に分化した。
骨髄スフィアは、コンドロサイト(A)、脂肪細胞(B)および骨細胞(C)に分化した。 胚スフィアはコンドロサイト(D)、脂肪細胞(E)および骨細胞(F)に分化した。 脊椎スフィアはコンドロサイト(G)と脂肪細胞(H)に分化した。<訳注:(I)が抜けている。ここでも草稿だと分かる。>

19 司書 :2018/06/04(月) 11:16:55
(英文)
Figure 13 Teratoma forming assay
10<to the power of 7> bone marrow cells and ES cells were injected subcutaneously into immunedificienl mice.
After 6 weeks of implantation, cell masses were harvested.

Figure 14 Teratoma like mass from bone marrow spheres contained nerve expressing betalll-tubuline (left)(ectoderm), muscle expressing desmin (middle)(mesoderm) and duct like structure expressing AFP (right)(endoderm).

20 翻訳機 :2018/06/04(月) 11:17:32
図13 テラトーマ形成実験
10の7乗個の骨髄細胞およびES細胞を免疫不全マウスに皮下注射した。
移植6週間後、細胞塊を採取した。

図14 骨髄スフィア由来のテラトーマ様腫瘤は、ベータⅢチューブリンを発現する神経(左)(外胚葉)、デスミンを発現する筋肉(中)(中胚葉)およびAFPを発現する管様構造(右)(内胚葉)を含んでいた。

21 司書 :2018/06/04(月) 11:18:21
(英文)
3.6 References

1. Berrier, A. L.; Yamada, K. M. Cell-matrix adhesion. J. Cell. Physiol.213:565□573: 2007.

2. Braam, S. R.; Zeinstra, L.i Litjens, S.; Ward-van Oostwaard, D.; van den Brink, S.; van Laake, L.; Lebrin, F.; Kats, P.; Hochstenbach, R.; Passier, R.; Sonnenberg, A.; Mummery, C. L. Recombinant vitronectin is a functionally defined substrate that supports human embryonic stem cell self-renewal via alphavbetaS integrin. Stem Cells 26-2257□2265: 2008.

3. Brakebusch, C.; Fassler, R. The integrin-actin connection, an eternal love affair. EMBO J. 22:2324□2333: 2003.

22 翻訳機 :2018/06/04(月) 11:19:00
3.6参照 <訳注:11jigen氏は本文中にリファランスナンバーが打たれていないと指摘しているが、それが編集中の草稿であることの何よりの証拠。>

1. Berrier, A. L.; Yamada, K. M. 細胞 - マトリックス接着。 Cell. Physiol.213:565□573: 2007.

2. Braam, S. R.; Zeinstra, L.i Litjens, S.; Ward-van Oostwaard, D.; van den Brink, S.; van Laake, L.; Lebrin, F.; Kats, P.; Hochstenbach, R.; Passier, R.; Sonnenberg, A.; Mummery, C. L. 組換えビトロネクチンは、機能的に定義された基質であり、アルファベータSインテグリンを介したヒト胚性幹細胞自己再生を支持する。 Stem Cells 26-2257□2265: 2008.

3. Brakebusch, C.; Fassler, R. インテグリンアクチンとのつながり、永遠の恋愛。EMBO J. 22:2324□2333: 2003.

23 司書 :2018/06/04(月) 11:20:04
(英文)
4. Busser, B. W.; Bulyk, M. L.; Michelson A. M. Toward a systems-level understanding of developmental regulatory networks. Curr. Opin. Genet. Dev. 18:521□529: 2008.

5. Casella, J. F.; Flanagan, M. D.; Lin, S. Cytochalasin D inhibits actin polymerization and induces depolymerization of actin filaments formed during platelet shape change. Nature 293-302□305: 1981.

6. Ceradini, D. J.; Kulkarni, A. R.l Callaghan, M. J.; Tepper, O. M.I Bastidas, N.;Kleinman, M. E.; Capla, J. M.; Galiano, R. D.; Levine, J. P.I Gurtner, G. C. Progenitor cell trafficking is regulated by hypoxic gradients through HIF-1 induction of SDF-1. Nat. Med. 10-858□864: 2004.

7. Chelberg, M. K.I Tsilibary, E. C.l Hauser, A. R.l McCarthy, J. B. Type IV coUagen-mediated melanoma cell adhesion and migration: involvement of multiple, distinct domains of the collagen molecule. Cancer Res. 49:4796□4802; 1989.

8. Chiou, S. H.; Kao, C. L.; Peng, C. H.; Chen, S. J.; Tarng, Y. W.; Ku, H. H.; Chen, Y. C.; Shyr, Y. M.; Liu, R. S.; Hsu, C. J.; Yang, D. M.; Hsul W. M.; Kuo, C. D.; Lee, C. H. A novel in vitro retinal differentiation model by co'culturing adult human bone marrow stem cells with retinal pigmented epithelium cells. Biochem. Biophys. Res. Commun. 326:578□585; 2005.

24 翻訳機 :2018/06/04(月) 11:20:46
4. Busser, B. W.; Bulyk, M. L.; Michelson A. M. 発達規制ネットワークのシステムレベルの理解に向けて。 Curr. Opin. Genet. Dev. 18:521□529: 2008.

5. Casella, J. F.; Flanagan, M. D.; Lin, S. サイトカラシンDはアクチン重合を阻害し、血小板形状変化の間に形成されるアクチンフィラメントの解重合を誘導する。 Nature 293-302□305: 1981.

6. Ceradini, D. J.l Kulkarni, A. R.l Callaghan, M. J.I Tepper, O. M.I Bastidas, N.;Kleinman, M. E.; Capla, J. M.I Galiano, R. D.I Levine, J. P.I Gurtner, G. C. 前駆細胞の輸送は、SDF-1のHIF-1誘導を介して、低酸素勾配によって調節される。 Nat. Med. 10-858□864: 2004.

7. Chelberg, M. K.I Tsilibary, E. C.l Hauser, A. R.l McCarthy, J. B. IV型コラーゲン媒介黒色腫細胞の接着および遊走:コラーゲン分子の複数別個領域の関与。 Cancer Res. 49:4796□4802; 1989.

8. Chiou, S. H.; Kao, C. L.; Peng, C. H.; Chen, S. J.; Tarng, Y. W.; Ku, H. H.; Chen, Y. C.; Shyr, Y. M.; Liu, R. S.; Hsu, C. J.; Yang, D. M.; Hsul W. M.; Kuo, C. D.; Lee, C. H. 成人ヒト骨髄幹細胞を網膜色素上皮細胞と共培養することによる新規試験管内網膜分化モデル Biochem. Biophys. Res. Commun. 326:578□585; 2005.

25 司書 :2018/06/04(月) 11:21:32
(英文)
9. Choi, J. S.; Yang, H. J.; Kim, B. S.; Kim, J. D.; Kim, J. Y.; Yoo, B.; Park, K.; Lee, H. Y.; Cho, Y. W. Human extracellular matrix (ECM) powders for injectable cell delivery and adipose tissue engineering. J. Control. Release 139:2□7; 2009.

10. Cooper, H. M.; Tamura, R. N.; Quaranta, V. The major laminin receptor of mouse embryonic stem cells is a novel isoform of the alpha 6 beta 1 integrin. J. CellBiol. 115:843□850; 1991.

11. Czirok, A.; Zamir, E. A.; Filla, M. B.; Little, C. D.; Rongisli, B. J. Extracellular matrix macroassembly dynamics in early vertebrate embryos. Curr. Top. Dev. Biol. 73:237□258; 2006.

12. Decline, F.; Rousselle, P. Keratinocyte migration requires alpha2beta1 integrin-mediated interaction with the laminin 5 gamma2 chain. J. Cell Sci. 114:811□823; 2001.

13. Desban, N.; Lissitzky, J. C.; Rousselle, P.; Duband, J. L. alpha1beta1-integrin engagement to distinct laminin-1 domains orchestrates spreading, migration and survival of neural crest cells through independent signaling pathways. J. Cell Sci. 119:3206□3218; 2006.

26 翻訳機 :2018/06/04(月) 11:22:22
9. Choi, J. S.; Yang, H. J.; Kim, B. S.; Kim, J. D.; Kim, J. Y.; Yoo, B.; Park, K.; Lee, H. Y.; Cho, Y. W. 注射による細胞送達および脂肪組織工学のためのヒト細胞外マトリックス(ECM)粉末。 J. Control. Release 139:2□7; 2009.

10. Cooper, H. M.; Tamura, R. N.; Quaranta, V. マウス胚性幹細胞の主要なラミニン受容体は、α6β1インテグリンの新規アイソフォームである。 J. CellBiol. 115:843□850; 1991.

11. Czirok, A.; Zamir, E. A.; Filla, M. B.; Little, C. D.; Rongisli, B. J. 初期の脊椎動物の胚における細胞外マトリックスのマクロダイナミクス Curr. Top. Dev. Biol. 73:237□258; 2006.

12. Decline, F.; Rousselle, P. ケラチノサイトの移動は、ラミニン5γ2鎖とのα2β1インテグリン媒介相互作用を必要とする。 J. Cell Sci. 114:811□823; 2001.

13. Desban, N.; Lissitzky, J. C.; Rousselle, P.; Duband, J. L. 異なるラミニン-1ドメインへのα1β1インテグリンの関与は、独立したシグナル伝達経路を介した神経堤細胞の広がり、遊走および生存を調整する。 J. Cell Sci. 119:3206□3218; 2006.

27 司書 :2018/06/04(月) 11:23:09
(英文)
14. Goto, M.; Sumiyoshi, H.; Sakai, T.J Fassler, R.! Ohashi, S.j Adachi, E.. Yoshioka, H.; Fujiwara, S. Ehmination ofepiplakin by gene targeting results in acceleration ofkeratinocyte migration in mice. Mol. Cell. Biol. 26:548□558; 2006

15. Hayashi, Y.; Furue, M. K; Okamoto, T.: Ohnuma, K.; Myoishi, Y.: Fukuhara, Y.: Abe, T.; Sato, J. D.; Hata, R.; Asasliima, M. Integrins regulate mouse embryonic stem cell self-renewal. Stem Cells 25-3005□3015; 2007.

16. Hehlgans, S.; Haase, M.; Cordes, N. Signalling via integrins: implications for cell survival and anticancer strategies. Biochim. Biophys. Acta 1775:163□180; 2007

17. Hynes, R. O. Integrins: bidirectional, allosteric signaling machines. Cell 110:673□687; 2002.

18. Khoshnoodi, J.; Pedchenko, V.; Hudson, B. G. Mammalian collagen IV. Microsc. Res. Tech. 71:357□370; 2008.

28 翻訳機 :2018/06/04(月) 11:23:47
14. Goto, M.; Sumiyoshi, H.; Sakai, T.J Fassler, R.! Ohashi, S.j Adachi, E.. Yoshioka, H.; Fujiwara, S. 遺伝子ターゲティングによるエプラパキンの絶滅により、マウスにおけるケラチノサイトの移動が加速される。 Mol. Cell. Biol. 26:548□558; 2006

15. Hayashi, Y.; Furue, M. K; Okamoto, T.: Ohnuma, K.; Myoishi, Y.: Fukuhara, Y.: Abe, T.; Sato, J. D.; Hata, R.; Asasliima, M. インテグリンは、マウス胚性幹細胞の自己再生を調節する。 Stem Cells 25-3005□3015; 2007.

16. Hehlgans, S.; Haase, M.; Cordes, N. インテグリンを介したシグナル伝達:細胞生存と抗癌戦略への影響。 Biochim. Biophys. Acta 1775:163□180; 2007

17. Hynes, R. O. インテグリン:双方向のアロステリックシグナルマシン。 Cell 110:673□687; 2002.

18. Khoshnoodi, J.; Pedchenko, V.; Hudson, B. G. 哺乳動物コラーゲンIV。 Microsc. Res. Tech. 71:357□370; 2008.

29 司書 :2018/06/04(月) 11:24:33
(英文)
19. Kim, Y. S.; Park, H. J.; Hong, M. H.; Kang, P. M.; Morgan, J. P.; Jeong, M. H.; Cho, J. G.: Park, J. C.; Ahn, Y. TNF-alpha enhances engraftment of mesenchymal stem cells into infarcted myocardium. Front. Biosci. 14:2845□2856: 2009.

20. Kjtaori, T.; Ito, H.; Schwarz, E. M.: Tsutsumi, R.; Yoshitomi, H.; Oishi, S.;Nakano, M.; Fujii, N.; Nagasawa, T.: Nakamura, T. Stromal cell-derived factor 1/CXCR4 signaling is critical for the recruitment of mesenchymal stem cells to the fracture site during skeletal repair in a mouse model. Arthritis Rheum. 60:813□823; 2009.

21. Kofidis, T.; de Bruin, J. L.; Yamane, T.: Balsam, L. B.; Lebl, D. R.; Swijnenburg, R. J. :Tanaka, M.; Weissman, I. L.; Robbins, R. C. Insulin-like growth factor promotes engraftment, differentiation, and functional improvement after transfer of embryonic stem cells for myocardial restoration. Stem Cells 22;1239□1245; 2004.

22. Kofidis, T.: de Bruin, J. L.: Yamane, T.; Tanaka, M.; Lebl, D. R.; Swijnenburg, R. J.; Weissman, L L.; Robbins, R. C. Stimulation of paracrine pathways with growth factors enhances embryonic stem cell engraftment and host-specific differentiation in the heart after ischemic myocardial injury. Circulation 111:2486□2493: 2005.

23. Laflamme, M. A.: Chen, K. Y.; Naumova, A. V.; Muskheli, V.; Fugate, J. A.; Dupras, S. K.; Reinecke, H.; Xu, C.; Hassanipour, M.; Pohce, S.; O'Sullivan, C.; Collins, L.; Chen, Y.; Minami, E.; Gill, E. A.; Ueno, S.; Yuan, C.; Gold, J.; Murry, C. E. Cardiomyocytes derived from human embryonic stem cells in pro-survival factors enhance function of infarcted rat hearts. Nat. Biotechnol. 25:1015□1024: 2007.

30 翻訳機 :2018/06/04(月) 11:25:13
19. Kim, Y. S.; Park, H. J.; Hong, M. H.; Kang, P. M.; Morgan, J. P.; Jeong, M. H.; Cho, J. G.: Park, J. C.; Ahn, Y.TNF-アルファは、間葉系幹細胞の梗塞心筋への移植を促進する。 Front. Biosci. 14:2845□2856: 2009.

20. Kjtaori, T.; Ito, H.; Schwarz, E. M.: Tsutsumi, R.; Yoshitomi, H.; Oishi, S.;Nakano, M.; Fujii, N.; Nagasawa, T.: Nakamura, T. 間質細胞由来因子1 / CXCR4シグナル伝達は、マウスモデルにおける骨格修復の間に骨折部位への間葉系幹細胞の動員にとって重要である。 Arthritis Rheum. 60:813□823; 2009.

21. Kofidis, T.; de Bruin, J. L.; Yamane, T.: Balsam, L. B.; Lebl, D. R.; Swijnenburg, R. J. :Tanaka, M.; Weissman, I. L.; Robbins, R. C. インスリン様増殖因子は、心筋再生のための胚性幹細胞移植後の生着、分化および機能改善を促進する。 Stem Cells 22;1239□1245; 2004.

22. Kofidis, T.: de Bruin, J. L.: Yamane, T.; Tanaka, M.; Lebl, D. R.; Swijnenburg, R. J.; Weissman, L L.; Robbins, R. C. 成長因子によるパラクリン経路の刺激は、虚血性心筋損傷後の心臓における胚性幹細胞の生着および宿主特異的分化を増強する。 Circulation 111:2486□2493: 2005.

23. Laflamme, M. A.: Chen, K. Y.; Naumova, A. V.; Muskheli, V.; Fugate, J. A.; Dupras, S. K.; Reinecke, H.; Xu, C.; Hassanipour, M.; Pohce, S.; O'Sullivan, C.; Collins, L.; Chen, Y.; Minami, E.; Gill, E. A.; Ueno, S.; Yuan, C.; Gold, J.; Murry, C. E. 生存促進因子におけるヒト胚性幹細胞由来の心筋細胞は、梗塞したラット心臓の機能を高める。Nat. Biotechnol. 25:1015□1024: 2007.

31 司書 :2018/06/04(月) 11:29:42
(英文)
24. Lee, J. M.; Dedhar, S.; Kalluri, R.I Thompson, E. W. The epithelial-mesenchymal transition- new insights in signaling, development, and disease. J. Cell Biol. 172:973□981; 2006.

25. Lee, K. H.; Chuang, C. K; Wang, H. W.: Stone, L.; Chen, C. H.; Tu, C. F. An alternative simple method for mass production of chimeric embryos by coculturing deヌded embryos and embryonic stem cells in Eppendorf vials. Theriogenology 67;228□237; 2007.

26. Leitinger, B.; Hohenester, E. Mammalian collagen receptors. Matrix Biol. 26:146-155; 2007.

27. Li, K.; Chuen, C. K.; Lee, S. M.; Law, P.; Fok, T. F.; Ng, P. C.; Li, C. K; Wong, D.: Merzouk, A.; Salad, H.; Gu, G. J.; Yuen, P. M. Small peptide アnalogue of SDF-lalpha supports survival of cord blood CD34+ cells in synergy with other cytokines and enhances their ex vivo expansion and engraftment into nonobese diabetic/severe combined immunodeficient mice. Stem Cells 24:55□64: 2006.

28. Li, S.; Tanaka, H.; Wang, H. H.; Yoshiyama, S.; Kumagai, H.; Nakamura, A.; Brown, D. L.; Thatcher, S. E..;Wright, G. L.; Kohama, K. Intracellular signal transduction for migration and actin remodeling in vascular smooth muscle cells after sphingosylphosphorylcholine stimulation. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 291:H1262□1272; 2006.

32 翻訳機 :2018/06/04(月) 11:30:26
24. Lee, J. M.; Dedhar, S.; Kalluri, R.I Thompson, E. W. 上皮間葉移行 - シグナル伝達、発生および疾患における新しい洞察。 J. Cell Biol. 172:973□981; 2006.

25. Lee, K. H.; Chuang, C. K; Wang, H. W.: Stone, L.; Chen, C. H.; Tu, C. F. 裸胚と胚性幹細胞をエッペンドルフバイアルに共培養することにより、キメラ胚の大量生産のための簡単な代替方法。Theriogenology 67;228□237; 2007.

26. Leitinger, B.; Hohenester, E. 哺乳類のコラーゲン受容体。 26:146-155; 2007.

27. Li, K.; Chuen, C. K.; Lee, S. M.; Law, P.; Fok, T. F.; Ng, P. C.; Li, C. K; Wong, D.: Merzouk, A.; Salad, H.; Gu, G. J.; Yuen, P. M. SDF-1αの小ペプチド類似体は、他のサイトカインとの相乗作用で臍帯血CD34 陽性細胞の生存を助け、それらの体外での増殖および非肥満糖尿病/重症複合免疫不全マウスへの移植を補強する。 Stem Cells 24:55□64: 2006.

28. Li, S.; Tanaka, H.; Wang, H. H.; Yoshiyama, S.; Kumagai, H.; Nakamura, A.; Brown, D. L.; Thatcher, S. E..;Wright, G. L.; Kohama, K. スフィンゴシルホスホリルコリン刺激後の血管平滑筋細胞における遊走およびアクチン再構築のための細胞内シグナル伝達。 Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 291:H1262□1272; 2006.

33 司書 :2018/06/04(月) 11:31:32
(英文)
29. Lock, J. G.; Wehrle-Haller, B.i Stromblad, S. Cell-matrix adhesion complexes: master control machinery of cell migration. Semin. Cancer Biol. 18:65□76; 2008

30. Matsuda, R.: Yoshikawa, M.; Kimura, H.; Ouji, Y.;Nakase, H.; Nishimura, F.; Nonaka, J.; Toriumi, H.; Yamada, S.; Nishiofuku, M.; Moriya, K.; Ishizaka, S.; Nakamura, M.; Sakaki, T. Cotransplantation of mouse embryonic stem cells and bone marrow stromal cells following spinal cord injury suppresses tumor development. Cell Transplant. 18:39□54; 2009.

31. Mooney, D. J.; Vandenburgh, H. Cell delivery mechanisms for tissue repair. Cell Stem Cell 2:205□213; 2008.

32. Muny, C. E.; Keller, G. Differentiation of embryonic stem cells to clinically relevant populations: lessons from embryonic development. Cell 132:661□680; 2008

33. Nishikawa, S.; Jakt, L. M.; Era, T. Embryonic stem-cell culture as a tool for developmental cell biology. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 8-502□507; 2007.

34 翻訳機 :2018/06/04(月) 11:32:13
29. Lock, J. G.; Wehrle-Haller, B.i Stromblad, S. 細胞 - マトリックス接着複合体:細胞移動のマスター制御機構。 Semin. Cancer Biol. 18:65□76; 2008

30. Matsuda, R.: Yoshikawa, M.; Kimura, H.; Ouji, Y.;Nakase, H.; Nishimura, F.; Nonaka, J.; Toriumi, H.; Yamada, S.; Nishiofuku, M.; Moriya, K.; Ishizaka, S.; Nakamura, M.; Sakaki, T. 脊髄損傷後のマウス胚性幹細胞および骨髄間質細胞の同時移植は、腫瘍発生を抑制する。 Cell Transplant. 18:39□54; 2009.

31. Mooney, D. J.; Vandenburgh, H. 組織修復のための細胞送達機構。Cell Stem Cell 2:205□213; 2008.

32. Muny, C. E.; Keller, G. 胚性幹細胞の臨床的に関連性の高い集団への分化:胚発生からの教訓。 Cell 132:661□680; 2008

33. Nishikawa, S.; Jakt, L. M.; Era, T. 発生細胞生物学のためのツールとしての胚性幹細胞培養。 Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 8-502□507; 2007.

35 司書 :2018/06/04(月) 11:32:57
(英文)
34. Pan, G.; Thomson, J. A. Nanog and transcriptional networks in embryonic stem cell pluripotency. Cell Res. 17:42□49: 2007.

35. Parameswaran, K.; Radford, K.; Zuo, J.; Janssen, L. J.; O'Byrne, P. M.; Cox, P. G. Extracellular matrix regulates human airway smooth muscle cell migration. Eur. Respir. J. 24;545□55l; 2004.

36. Passier, R.; van Laake, L. W.; Mummery, C. L. Stem-cell-based therapy and lessons from the heart. Nature 453:322□329; 2008.

37. Perris, R.; Syfrig, J.; Paulsson, M.; Bronner-Fraser, M. Molecular mechanisms of neural crest cell attachment and migration on types 1 and IV collagen. J. Cell Sci. 106(Pt4):1357□1368; 1993.

38. Poschl, E.; Schlotzer-Schrehardt, U.; Brachvogel, B.; Saito, K.; Ninomiya, Y.: Mayer, U. Collagen IV is essential for basement membrane stability but dispensable for initiation of its assembly during early development.

36 翻訳機 :2018/06/04(月) 11:33:38
34. Pan, G.; Thomson, J. A. 胚性幹細胞多能性におけるNanogおよび転写ネットワーク。 Cell Res. 17:42□49: 2007.

35. Parameswaran, K.; Radford, K.; Zuo, J.; Janssen, L. J.; O'Byrne, P. M.; Cox, P. G. 細胞外マトリックスは、ヒト気道平滑筋細胞の移動を調節する。 Eur. Respir. J. 24;545□55l; 2004.

36. Passier, R.; van Laake, L. W.; Mummery, C. L. 幹細胞に基づく療法と心臓からの教訓。Nature 453:322□329; 2008.

37. Perris, R.; Syfrig, J.; Paulsson, M.; Bronner-Fraser, M. 1型および4型コラーゲンにおける神経堤細胞の接着および遊走の分子機構 J. Cell Sci. 106(Pt4):1357□1368; 1993.

38. Poschl, E.; Schlotzer-Schrehardt, U.; Brachvogel, B.; Saito, K.; Ninomiya, Y.: Mayer, U. コラーゲンIVは基底膜の安定性に必須であるが、初期発生時の組成開始には必ずしも必要でない。

37 ふむ :2018/06/04(月) 11:34:29
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38 :2018/06/04(月) 11:41:51
イェイ。

39 :2018/06/20(水) 05:58:33
イェイ。

40 :2018/07/07(土) 07:43:06
イェイ。


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